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《自然·代謝》:中山一院團隊發(fā)現(xiàn)肝癌發(fā)病新機制

 子孫滿堂康復師 2022-11-04 發(fā)布于黑龍江

近年來,越來越多的研究表明,RNA的表觀遺傳修飾在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中具有重要的作用,其中N6-腺苷酸甲基化(m6A)是最常見的一種[1]。但核糖體RNA(rRNA)的m6A修飾在癌癥中發(fā)揮的功能以及其分子機制并沒有被完全闡明。

近日,由中山大學附屬第一醫(yī)院林水賓、匡銘和彭穗領(lǐng)銜的研究團隊,在著名期刊《自然·代謝》上發(fā)表了重要研究成果[2]。

他們發(fā)現(xiàn),甲基轉(zhuǎn)移酶METTL5介導的18S RNA m6A修飾的丟失,能夠抑制80S核糖體的組裝聚集,進而降低脂肪酸代謝相關(guān)基因的mRNAs翻譯,其中包括乙酰輔酶A合成酶家族成員(ACSL)。另一方面,ACSL4亦能夠通過調(diào)控脂肪酸的代謝,進而影響METTL5的功能。體內(nèi)靶向ACSL4與METTL5可以抑制肝癌的發(fā)生和發(fā)展。

該項研究闡明了rRNA的表觀遺傳修飾與mRNA的翻譯以及脂肪酸代謝之間的關(guān)系,為肝癌靶向治療策略的發(fā)展提供了分子基礎(chǔ)。

論文首頁截圖

腫瘤細胞具有細胞核增大、核仁結(jié)構(gòu)異常的特征,這些不同于尋常細胞的特征使腫瘤細胞能夠快速無限地繁殖。

其中,核仁在rRNA的轉(zhuǎn)錄與核糖體的生成中發(fā)揮重要的作用。伴隨著核仁結(jié)構(gòu)的異常,腫瘤細胞內(nèi)同時會發(fā)生核糖體生成與mRNA轉(zhuǎn)錄失調(diào),從而快速合成癌細胞增殖所需的蛋白。然而,引起腫瘤細胞的核糖體生成異常的原因尚未查明[3-4]。

這件事要想整明白還有點兒難,畢竟核糖體的生成是一個高度協(xié)調(diào)的過程。在這個過程中,核糖核蛋白需要包裹住rRNA,進而構(gòu)成基因轉(zhuǎn)錄翻譯的主要場所。我們目前掌握的線索是,核糖體生成的過度激活會造成mRNA的異常轉(zhuǎn)錄和蛋白質(zhì)翻譯的改變,從而使細胞代謝過程重塑,并逐漸轉(zhuǎn)化為癌細胞[5]。

避難就易,或許我們可以從核糖體的重要組成部分之一——rRNA著手調(diào)查。


rRNA是否會通過影響核糖體的生成而引起癌癥的發(fā)生呢?近期的一些研究表明,不同RNA的轉(zhuǎn)錄后修飾與基因的表達及癌癥的發(fā)生密切相關(guān)。只不過,雖然rRNA占據(jù)細胞總RNA的80%,但多數(shù)研究集中在mRNA修飾與腫瘤的關(guān)系上,rRNA的修飾在rRNA加工和癌癥中的作用知之甚少。

已知rRNA的m6A修飾通常由不同的酶催化,并發(fā)生在特異的位點上,其中甲基轉(zhuǎn)移酶METTL5和ZCCHC4分別介導18S rRNA的1832位點和28S rRNA的4220位點上的甲基化(m6A1832, m6A4220)[6-7]。那么,rRNA的m6A修飾在細胞乃至生命體中到底扮演什么角色呢?

研究人員首先對TCGA數(shù)據(jù)庫中20種癌癥類型進行分析,發(fā)現(xiàn)甲基轉(zhuǎn)移酶METTL5和與它的相互作用蛋白TRMT112在80%的癌癥類型中高表達,其中包括肝細胞癌(HCC)。此外, METTL5-TRMT112的表達與HCC的惡性程度和不良預后密切相關(guān)。肝癌細胞系和HCC腫瘤患者的樣本檢測與數(shù)據(jù)庫分析結(jié)果一致。

進一步的實驗表明,在肝癌細胞系中過表達METTL5能夠顯著促進腫瘤細胞的生長增殖及遷移侵襲能力。同時,動物水平上的小鼠體內(nèi)成瘤實驗與細胞體外克隆形成實驗結(jié)果一致。相應的,敲低METTL5的表達,肝癌細胞生長增殖與遷移侵襲能力受到抑制,凋亡細胞比例增高。另外,功能獲得與功能缺失實驗,均表明了METTL5的促癌作用。

為了深入探究作為甲基轉(zhuǎn)移酶的METTL5影響腫瘤的機制,研究人員利用RNA免疫共沉淀(RIP)的技術(shù)檢測到,METTL5敲低后18S rRNA的m6A修飾水平明顯降低。應用單堿基延長和連接的qPCR擴增(SELECT)技術(shù),證實METTL5確實能夠動態(tài)調(diào)控18S rRNA的A1832位點上的m6A修飾。

值得注意的是,METTL5敲低只影響18S rRNA的修飾,并不影響其表達。

考慮到,18S rRNA是核糖體的主要組成部分,研究人員推測18S rRNA的m6A修飾可能會與核糖體的生成及功能有關(guān)。

的確,敲低METTL5的細胞中,80S核糖體的峰值與蛋白質(zhì)合成速率降低。研究人員進一步通過RIP-qPCR和凝膠阻滯實驗(EMSA)發(fā)現(xiàn),METTL5介導的18S rRNA的m6A修飾是核糖體大亞基蛋白24(RPL24)與18S rRNA相互作用的必要條件,從而確保80S 核糖體的募集和mRNA的翻譯。

接下來,研究人員試圖找到受METTL5影響的主要mRNA。

他們對敲除METTL5的肝癌細胞進行了核糖體圖譜測序(Ribo-seq),對翻譯效率(TEs)下調(diào)的mRNA進行京都基因與基因組百科全書(KEGG)通路富集分析。結(jié)果顯示,這些受METTL5影響的mRNA被富集在多個重要的通路里,包括脂肪酸代謝相關(guān)通路。

不僅如此,可在敲低METTL5的細胞中觀察到,游離脂肪酸、甘油三酯、膽固醇均減少。同位素示蹤與液相質(zhì)譜(LC-MS)實驗則表明,METTL5缺失主要影響長鏈脂肪酸,尤其是多不飽和脂肪酸(PUFAs)的生成,脂肪酸的氧化也降低。以上結(jié)果均顯示了METTL5在調(diào)節(jié)HCC細胞脂肪酸代謝中具有重要作用。

此外,研究人員發(fā)現(xiàn)具有 5’ 端寡嘧啶(5’ TOP)基序的mRNA轉(zhuǎn)錄本更傾向于被METTL5調(diào)控,而這種TOP mRNA已被報道與核糖體的生成有關(guān)[8]。

隨后,他們鎖定了乙酰輔酶A合成酶長鏈家族(ACSL)。他們發(fā)現(xiàn),ACSL富集在METTL5敲除后發(fā)生改變的脂肪酸代謝通路中,且ACSL4具有典型的5’ TOP基序。熒光素酶報告實驗顯示,5’ TOP基序?qū)τ贛ETTL5促進ACSL4 mRNA的翻譯十分重要。敲低METTL5后,ACSL蛋白水平降低。

更有趣的是,研究人員發(fā)現(xiàn),在敲除METTL5的細胞中回補ACSL4能夠升高脂肪酸的合成與氧化,并促進HCC的惡性進展。如果在肝臟特異性敲除的小鼠中敲低ACSL4,則能夠進一步降低肝癌腫瘤的大小,抑制腫瘤的發(fā)展。

綜上所述,這項研究用充足的證據(jù)表明,METTL5調(diào)控的18S rRNA的m6A修飾是確保80S核小體正確募集組裝的必要條件,從而維持mRNA的穩(wěn)定翻譯,促進脂肪酸的過度生成與氧化,使細胞轉(zhuǎn)化為癌細胞。

更重要的是,該項研究為靶向METTL5與ACLS4的HCC治療提供了強有力的證據(jù),未來該靶點有望在臨床醫(yī)藥方面得到開發(fā)。

參考文獻:

[1] Chen XY, Zhang J, Zhu JS. The role of m6A RNA methylation in human cancer. Mol Cancer. 2019;18(1):103.

[2] Peng H, Chen B, Wei W, et al. N6-methyladenosine (m6A) in 18S rRNA promotes fatty acid metabolism and oncogenic transformation. Nat Metab. 2022;4(8):1041-1054.

[3] Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 2011;144(5):646-674.

[4] Zink D, Fischer AH, Nickerson JA. Nuclear structure in cancer cells. Nat Rev Cancer. 2004;4(9):677-687.

[5] Bursa? S, Prodan Y, Pullen N, Bartek J, Volarevi? S. Dysregulated Ribosome Biogenesis Reveals Therapeutic Liabilities in Cancer. Trends Cancer. 2021;7(1):57-76.

[6] van Tran N, Ernst FGM, Hawley BR, et al. The human 18S rRNA m6A methyltransferase METTL5 is stabilized by TRMT112. Nucleic Acids Res. 2019;47(15):7719-7733.

[7] Ma H, Wang X, Cai J, et al. N6-Methyladenosine methyltransferase ZCCHC4 mediates ribosomal RNA methylation. Nat Chem Biol. 2019;15(1):88-94.

[8] Khajuria RK, Munschauer M, Ulirsch JC, et al. Ribosome Levels Selectively Regulate Translation and Lineage Commitment in Human Hematopoiesis. Cell. 2018;173(1):90-103.e19.


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