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原理易懂,結(jié)果難做——如何分析QPCR的結(jié)果?

 ypgao 2017-08-08
本文介紹QPCR的結(jié)果如何統(tǒng)計(jì)分析。
科研狗將以案例的方式,針對(duì)不同實(shí)驗(yàn)?zāi)康膩?lái)介紹如何設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)和統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果,本次介紹案例1.


案例1


假設(shè)我們有一個(gè)藥物,加入細(xì)胞培養(yǎng)液中看他對(duì)于p53mRNA水平的影響,那么如何設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組呢?如何分析結(jié)果?


實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
分別種兩小皿(3.5cm)細(xì)胞,一皿加藥,另外一皿加對(duì)照。處理一段時(shí)間之后,分別收細(xì)胞提RNA,逆轉(zhuǎn)錄,然后準(zhǔn)備做qPCR,這個(gè)時(shí)候我們需要做的qPCR孔如下:
注意這里面要區(qū)別一個(gè)概念是“獨(dú)立實(shí)驗(yàn)重復(fù)”和“PCR重復(fù)”,上面p53和GAPDH都有三個(gè)PCR孔,這是PCR重復(fù),為了消除本次操作誤差引的。獨(dú)立實(shí)驗(yàn)重復(fù)指的是我們做的三次獨(dú)立的重復(fù)試驗(yàn),具體到本例中,就要求我們?cè)谄渌麜r(shí)間做再種兩小皿細(xì)胞,再提mRNA,再逆轉(zhuǎn)錄,再做qPCR,如此做了三次實(shí)驗(yàn)后才能算作獨(dú)立實(shí)驗(yàn)重復(fù),我們統(tǒng)計(jì)的時(shí)候統(tǒng)計(jì)的是獨(dú)立實(shí)驗(yàn)重復(fù),而不能單純以上面三個(gè)孔作為統(tǒng)計(jì)誤差的來(lái)源。
做完上述實(shí)驗(yàn)之后,我們得到如下的結(jié)果(下圖中值均為Ct值):
第一次獨(dú)立實(shí)驗(yàn)Test1
我們?cè)僮鰞纱为?dú)立重復(fù)試驗(yàn),得到結(jié)果如下:
第二次獨(dú)立實(shí)驗(yàn)Test2

第三次獨(dú)立實(shí)驗(yàn)Test3


結(jié)果分析


下圖為計(jì)算過(guò)程,是qPCR計(jì)算的核心所在,大部分同學(xué)都在此處不知如何計(jì)算
△Ct=Ct(p53)-Ct(GAPDH);
這里需要注意的是2^-△△Ct的計(jì)算,首先我們把對(duì)照里面的2^-△Ct求平均(上圖中為0.000780573),然后用2^-△Ct 中的每一個(gè)數(shù)據(jù)除以這個(gè)數(shù)據(jù),對(duì)照組也同樣除。
接著我們?cè)僬硐聰?shù)據(jù):
那么這個(gè)就可以畫(huà)出柱形圖了~
雖然偏差都有了,雖然看上去相差那么大,如何確定P值呢。我們可以采用SPSS統(tǒng)計(jì)軟件來(lái)統(tǒng)計(jì)P值,在此就不再說(shuō)明,需要強(qiáng)調(diào)的是我們要確定用什么檢驗(yàn)方法來(lái)檢驗(yàn)顯著性差異,因?yàn)槲覀兪嵌际仟?dú)立的樣本,所以我們采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)方法來(lái)檢驗(yàn)。SPSS的使用方法在這就不介紹了。(可以登錄科研狗網(wǎng)站http://www.)。
最后強(qiáng)調(diào)下,這種方法只適用于單因素處理比較,這個(gè)因素(本例子中為加藥)處理得到的結(jié)果應(yīng)該是穩(wěn)定的(表示在相同細(xì)胞中加相同濃度的藥物,p53mRNA的變化水平也是一致的)。
在臨床上我們經(jīng)常會(huì)做到比較癌和癌旁中某種基因mRNA水平的差異,這種不能用上面方法,因?yàn)閭€(gè)體差異非常大,每個(gè)人的癌和癌旁都不一樣,不能把每個(gè)人的癌和癌旁當(dāng)作是獨(dú)立實(shí)驗(yàn)的重復(fù)(Test1,Test2,Test3...),我們將在下一講中介紹。

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